VII.3.3.  Temps de saignement par la méthode de IVY 3 points

Ø Conditions

Procéder à un petit interrogatoire au patient avant l’incision:

•       Avez-vous avez pris de l’aspirine ces dernières 48 heures ?

•       saignez –vous souvent ? Par exemple en vous brossant les dents

•       Vérifier si la notion d’hémophilie n’est pas évoquée sur la prescription médicale.

 

Ø Technique

•       Placer le brassard au niveau du bras et mettre la pression du tensiomètre à 40 mmHg de mercure

•       Nettoyer l’avant-bras avec l’éther (éviter le passage de la veine)

•       A l’aide d’un vaccinostyle piquer en 3 points au niveau de la zone nettoyée              Dès l'apparition de la première goutte de sang, déclencher le chronomètre

•       Toutes les 30 secondes, recueillir les gouttes de sang sur une feuille de papier buvard sans toucher aux points de piqûre.

•       Arrêter le chronomètre dès le sang cesse de couler au niveau de 2 points

•       Noter le temps de saignement

•       La valeur normale est comprise entre 2 et 6 minutes

 

VII.3.4.  Hémoculture 

Ø Conditions

Ce prélèvement doit être réalisé :

•       de préférence, en dehors de toute antibiothérapie

•       de façon aseptique, répété et en quantité suffisante 10 ml pour l’inoculation des ballons

•       au moment des clochers thermiques (à partir de 38,5°C) ou en cas d’hypothermie chez le nourrisson (< 36°C)

 

Ø Technique prélèvement à la seringue            Si présence d’un brasseur d’air, le stopper.

•       se laver les mains au savon puis les nettoyer à l’alcool

•       nettoyer le bouchon du ballon d'hémoculture à l'alcool iodé et laisser le tampon alcoolisé sur le bouchon

•       placer le garrot

 

•       repérer la veine

•       nettoyer la peau à l'alcool iodé, puis à l’alcool 70°

•       à l'aide de la seringue, piquer dans la veine et aspirer une quantité de sang suffisante pour l’inoculation des ballons aérobis et anaérobis

•       retirer la seringue et l’aiguille, éliminer l’aiguille dans un container rigide pour objet piquant et tranchant

•       monter une nouvelle aiguille stérile

•       inoculer les ballons d'hémoculture

•       mélanger par retournement (3 à 5 fois)

•       identifier les échantillons et les faire parvenir au laboratoire le plus rapidement possible      les placer à l’étuve à 37°C

 

Ø Technique prélèvement sous vide

 

•       utiliser le gros curseur adapté aux ballons d’hémoculture et s’aider d’un dispositif de prélèvement BD vacutainer avec tubulure (ce dernier facilite le changement de curseur quand on doit prélever d’autres tubes)

•       piquer dans la veine

•       laisser couler le sang dans le ballon jusqu’à l’arrêt

•       identifier et faire parvenir au laboratoire pour une incubation rapide à 37°C

NB : En cas de prélèvement à la seringue, si l’hémoculture est accompagnée d’autres prélèvements, remplir d’abord les tubes, changer l’aiguille avant d’inoculer le (s) ballon (s).

Dans le cas de prélèvement sous vide, commencer par les ballons d’hémoculture avant de remplir les autres tubes.

A l’aide du dispositif de prélèvement BD vacutainer avec tubulure, remplir le flacon aérobie (pour ne pas transférer d’air) avant le flacon anaérobie.

 

VII.3.5.  Tests de tolérance au glucose 

Avertir les patients de la durée du temps à passer au laboratoire pour effectuer les tests dynamique

VII.3.5.1. Glycémie à jeun et post prandiale

L’échantillon pour glycémie à jeun doit être prélevé après un jeûne de 8 à 12 heures.

Le prélèvement pour la glycémie post prandiale est à effectuer 2 heures après le début du repas (petit déjeuner ou du déjeuner). Le patient ne doit rien changer à ses habitudes et doit prendre ses médicaments s’il a un traitement en cours. VII.3.5.2. Hyperglycémie provoquée par voie orale

-   Conditions :

 

•       Cet examen se fait du lundi au vendredi au laboratoire, exclusivement le matin et peut prendre 3 à 4 heures.

•       Sujet à jeun depuis 8 à 12h, repos physique pendant l’épreuve (allongé ou assis)

•       Ne pas manger, boire ni fumer durant le test

•       Ne pas effectuer le test chez les sujets de plus de 70 ans.

•       Ne pas effectuer chez le sujet diabétique

•       Ne pas faire en cas de traitement avec les médicaments hyperglycémiant (Corticoïdes, Estrogènes, diurétiques thiazidiques) et hypoglycémiants (aspirine, quinine, perhexiline, dysopyramide)

 

-   Protocole 

•       Placer un cathéter monté d’une seringue rincée avec une solution d’héparine dans du sérum physiologique

•       Faire un prélèvement sanguin chez le patient à jeun (temps T0)

•       Déposer au laboratoire pour le dosage de la glycémie à jeun

•       Si la glycémie à jeun est inférieure à 1,26 g/l faire absorber lentement au patient (5 minutes) du « TOPSTAR 75 »  (75 g) chez l’adulte, ou 5,8 ml de soluté hypertonique par kilo de poids (1,75 g/kg) chez l’enfant sans dépasser 75 g

•       Recueillir des échantillons dans des tubes secs dans des tubes secs aux temps suivants :

             ▪ T0 + 30 min

             ▪ T0 + 60 min

             ▪ T0 + 90 min

             ▪ T0 + 120 min

             ▪ T0+ 150 min

             ▪ T0 + 180 mn

NB : Acheminer les échantillons sanguins convenablement identifiés au laboratoire au fur et à mesure des prélèvements. Noter tout signe d’hypoglycémie (vertiges, sudation). En cas de malaise du patient faire un prélèvement sanguin, noter l’heure, arrêter l’épreuve et donner un jus sucré.

Si la glycémie à jeun est supérieure à 1,26 g/l, avertir le médecin avant de continuer l’épreuve.

 

VII.3.5.3. Test d’O’ Sullivan

-  But du test

Permet un dépistage précoce du diabète gestationnel. Il est effectué au cours du 6ème mois de grossesse, chez une femme présentant un facteur de risque du diabète. C’est un test d’hyperglycémie simplifié.

 

-  Conditions

Patiente à jeun

-  Protocole

O Sullivan avec 75 grammes de glucose

•       Effectuer un prélèvement sanguin chez le sujet à jeun (temps T0)

•       Faire boire au sujet un flacon de « TOPSTAR 50 » ou 166 ml de sérum glucosé à 30% (50 g de glucose) en moins de 5 minutes

•       Prélever au bout de T0 + 60 minutes.

O Sullivan avec 75 grammes de glucose

•       Effectuer un prélèvement sanguin chez le sujet à jeun (temps T0)

•       Faire boire au sujet un flacon de « TOPSTAR 75 » (75 g de glucose) en moins de 5 minutes    Prélever au bout  120 minutes

VII.3.6.  Prélèvement de sang pour dosage du cortisol sérique

Prélèvement réalisé entre 8 et 10 heures  ou entre 16 et 17h (en fonction de la demande du médecin) sur tube héparine lithium (bouchon vert), sur tube sec (bouchon rouge) ou sur tube sec avec gel séparateur (bouchon jaune.  

 

VII.4. Procédures de recueil des échantillons d’urine

VII.4.1. Examen cytobactériologique des urines 

-   Intérêt : 

L'examen cytobactériologique des urines est un examen simple qui permet de poser le diagnostic de certitude d’une infection du tractus urinaire. 

-   Préconisation du prélèvement : 

A faire avant tout traitement antibiotique et, si possible, sur des urines de 3 à 4 heures après la dernière miction. 

•       Se laver les mains 

•       Faire une toilette soigneuse à l’aide de lingettes désinfectantes remises par le laboratoire ou à l’aide d’un savon antiseptique 

•       Eliminer le premier jet dans les toilettes 

•       Ouvrir le flacon stérile fourni par le laboratoire et y recueillir, à la volée, 10 à 35 ml d’urines du milieu du jet. Refermer soigneusement le flacon. 

•       Identifier le flacon avec votre nom et prénoms si cela n'a pas été fait par le laboratoire. Noter la date et l’heure du recueil. 

En cas de recueil hors du laboratoire, nous faire parvenir l’échantillon dans les plus brefs délais dans l’heure qui suit. Cet échantillon peut être conservé au réfrigérateur (+4° C) maximum 3 heures. 

 

VII.4.2. Chimie urinaire (Bandelette,  Proteinurie/créatinurie et  Albuminurie/ créatinurie)

Ces examens sont effectués sur un spot urinaire, les urines sont recueillies dans un récipient prévu à cet effet. Si l’analyse n’est pas effectuée aussitôt après la collecte les urines doivent être réfrigérées.

Conditions

-  Ne pas être en période de règle pour la femme

-  Etre à jeun pour le dosage du glucose

 Prélèvement

-  pour les dosages qualitatifs (recherche d'albumine, sucre, corps cétoniques, etc.), recueillir une miction dans un pot à urines stérile de 60 ml

 

 

VII.4.3. HLM ou compte d’Addis 

-  Intérêt : 

Cette analyse consiste à mesurer le débit des hématies et des leucocytes passant dans les urines. Le recueil concerne la totalité des urines émises pendant 3 heures, 2 heures chez les enfants. 

-  Préconisation du prélèvement : 

•       Identifier le flacon avec votre nom et prénoms si cela n’a pas été fait par le laboratoire         Vider la vessie dans les toilettes. 

•       Boire l’équivalent d’un grand verre d’eau

•       Noter la date et l’heure sur le flacon fourni

•       Rester au repos pendant 3 heures (le plus exactement possible)

•       Ensuite recueillir la totalité des urines dans le flacon au bout des 3 heures

•       Noter l’heure de fin de recueil

•       Acheminer le flacon au laboratoire dans les plus brefs délais (environ 1 heure).

 

VII.4.4 Recueil des urines du premier jet matinal

-  Intérêt 

 

Ce test a pour but d’isoler des germes intracellulaires comme les chlamydiae et les mycoplasmes, il est parfois effectué à la place du prélèvement urétral qui peut être traumatisant pour le patient

-  Préconisation du prélèvement

•       Se laver les mains au savon

•       Nettoyer le méat urétral avec un tampon antiseptique

•       Rincer à l’eau distillée ou physiologique stérile

•       Ouvrir le flacon stérile fourni à cet effet et recueillir le début de la miction (8 à 15 ml d’urines) jusqu’au trait indiqué sur le flacon

•       Refermer soigneusement le flacon et l’identifier avec votre Nom, prénoms si cela n’a pas été fait par le laboratoire

•       Noter l’heure du recueil et acheminer l’échantillon au laboratoire dans l’heure qui suit.

 

VII.4.5 Collecte des urines des 24H

-  Intérêt 

Ce recueil permet l'analyse de certains paramètres de biochimie urinaire. 

-  Préconisation du prélèvement 

•       Identifier le flacon avec : vos Nom et Prénoms si cela n’a pas été fait par le laboratoire, la date et l’heure de début du recueil 

 

•       Au réveil vider la vessie dans les toilettes, on élimine ainsi les premières urines du matin

 

 

 

•       Pendant 24h, recueillir dans le flacon fourni par le laboratoire, de la journée et toutes les urines de la nuit, et enfin la première urine du matin. Ensuite acheminer la totalité de l’échantillon au laboratoire dans les plus brefs délais (maximum 2 heures après la fin du recueil), le récipient de collecte doit être bien fermé et acheminé dans un sac prévu à cet effet et fourni par le labo.

 

VII.5. procédures prélèvements bactériologiques

VII.5.1 Prélèvement vaginal

Les conditions sont décrites dans le chapitre « Préconisation »

La mise en place du spéculum nécessite la confiance de la patiente qui doit être prévenue de la simplicité de l'examen et de son utilité. La taille du spéculum sera choisie en fonction de l'âge et de la parité de la femme.

•       choisir des écouvillons et des tubes d’eau physiologique stériles, les identifier en vagin et endocol sur les étiquettes de la feuille de prélèvement.

•       étaler un carré de drap d’examen sur la table gynécologique

•       Installer la patiente en position gynécologique

•       éclairer avec la lampe d'examen

•       porter les gants

•       Placer un spéculum stérile dans le vagin de sorte que le col de l’utérus soit visible

•       A l’aide d’un écouvillon, prélever au niveau de l’exocol

•       nettoyer l’exocol avec un tampon de bétadine gynécologique qui sera ensuite éliminé

•       avec un nouvel écouvillon prélever au niveau de l’endocol en faisant de petites rotations à 360 degrés

•       si la recherche de chlamydiae et/ ou de mycoplasmes est envisagée prélever à l’aide d’écouvillon en dacron ou en aluminium, en raclant le maximum de cellules de l’endocol

•       retirer le spéculum

•       appliquer un papier pH sur les sécrétions collées au spéculum, noter la valeur du pH sur la feuille de paillasse

•       Renseigner la partie « l’examen macroscopique » de la feuille de paillasse. 

•       Après avoir libérer la patiente, jeter le drap d’examen utilisé dans la poubelle des objets non contaminés

•       acheminer échantillon et feuille de paillasse au niveau de la salle de tri ou au laboratoire

NB : Pour la recherche de Chlamydiae décharger l écouvillon prévu à cet effet dans un milieu de transport.

 

 

 

 

 

 

VII.5.2 Prélèvement vulvaire

Il est effectué chez les jeunes filles et les enfants. Le spéculum n'est pas utilisé.

- Conditions

Ne pas nettoyer la zone vulvaire le jour de l’examen, en dehors de la période de menstruation chez la jeune fille.

-Technique

•       couvrir la table gynécologique avec un drap d’examen

•       installer la patiente en position gynécologique

•       écarter les grandes lèvres

•       Nettoyer superficiellement la vulve à l’aide d’un antiseptique doux

•       poser le bout de l’écouvillon stérile sur la vulve, faire quelques rotations afin de prélever les sécrétions

•       s’il y a des lésions inflammatoires,frotter dessus avec un autre écouvillon stérile

Renseigner la feuille de paillasse et l’envoyer au laboratoire avec les échantillons

VII.5.3 Prélèvement pour FCV

Conditions

Ne pas être en période de menstruation

Technique monocouche

Présentation de la technique cytologique en monocouche

La technique du frottis monocouche est une innovation technologique qui améliore la qualité du frottis de dépistage du cancer du col utérin.

Cette technique apporte :

-  Une facilité de prélèvement pour le praticien.

-  Le prélèvement se fait en un geste unique avec une brosse qui est transférée dans un flacon de conservateur cellulaire.

-  Un recueil de la totalité du matériel cellulaire prélevé, d'où un meilleur échantillonnage.

-  Une importante diminution du taux de frottis non interprétables dus à une mauvaise fixation, à la présence de sang, à l'excès de polynucléaires, à la superposition cellulaire, à l'étirement ou à l'écrasement des cellules.

-  Un confort de lecture pour le cytopathologiste.

-  La possibilité de pratiquer de nouvelles analyses à partir du même prélèvement (typage viral, etc.).

 

 

 

 

Protocole de prélèvement (pour frottis en couche mince)

Cette technique permet d'effectuer des frottis monocouches :

-  Recueillir un échantillon cellulaire du col de l'utérus en introduisant la partie centrale de la brosse dans le canal endocervical, afin que les poils latéraux entrent en contact avec l’exocol ; tourner la brosse (2 tours au moins)

-  Décharger la brosse dans le flacon contenant la solution de conservation.

-  Visser le bouchon à fond

-  Identifier le flacon avec l’étiquette de la feuille de prélèvement et remplir le formulaire " Examen cytologique"

-  Déposer le tout au laboratoire

 

VII.5.4 Prélèvement urétral 

- Conditions

Pas de traitement antibiotique, sinon observer une fenêtre thérapeutique de 48 à 72 heures - Technique

En cas écoulement faire un écouvillonnage urétral, s’il n’y a pas d’écoulement, recueillir les urines du 1er jet matinal.

VII.5.5. Pus et liquides d’épanchements 

Il existe une grande diversité de germes isolés dans les pus, liée à la grande diversité des sites et de la nature des produits pathologiques. Les prélèvements peuvent être séparés en trois classes :

Classe 1 : ceux provenant de zones profondes fermées normalement stériles (liquide des séreuses, pleural, liquide articulaire, péricardique, synoviale abcès du cerveau etc.). Leurs prélèvements sont obtenus au cours d’un acte chirurgical, à l’aide d’une aiguille montée d’une seringue. En cas d’infection, ils sont normalement monomicrobiens et ne sont pas contaminés (germes de la peau éliminés par l’asepsie avant l’acte chirurgical). Une odeur fétide et une couleur « chocolat » doivent inciter à une recherche de germes anaérobies et l’utilisation de milieu de transport adéquat.

Classe 2 : ceux provenant de zones profondes communiquant avec des surfaces possédant une flore commensale (abcès fistulisés)

•       désinfecter l'orifice extérieur avec une solution bactéricide

•       à l'aide d'une seringue montée d’une aiguille essayer de prélever le plus profondément possible. On peut également utiliser un cathéter. La quantité de liquide prélevée doit être suffisante pour permettre la recherche de germes anaérobies.

 

 

 

Classe 3 : collections suppurées provenant de zones superficielles possédant leur propre flore commensale (escarres, brûlures)

•       enlever les débris cellulaires et tissulaires par lavage avec de l’eau physiologique.     plusieurs techniques sont alors possibles :

•  aspiration à la pipette stérile

•  biopsie cutanée

•  prélèvement à la seringue

NB : dans chacun de ces cas, les renseignements cliniques sont indispensables pour orienter la recherche bactériologique et différencier les contaminants des germes infectieux. En cas de traitement antibiotique, la ou les molécules utilisées doivent être indiquées. Les prélèvements doivent être rapidement acheminés au laboratoire.

Pour la sécurité des agents du laboratoire et des agents qui transportent les échantillons, les seringues montées ne sont pas acceptées.

VII.5.6. Liquide Céphalo-rachidien LCR 

C'est un acte médical, le prélèvement est effectué par le médecin et envoyé au laboratoire avec les renseignements cliniques essentiels :

•       Nom du patient

•       Date de naissance

•       Diagnostic clinique

•       Ou symptomatologies à l’origine du prélèvement

•       Existence d'une éventuelle antibiothérapie (préciser la nature de l'antibiotique utilisé)

Dès réception du LCR identifier correctement le tube avant d’être envoyé au laboratoire

NB: Le LCR est une urgence technique, donc faire acheminer le plus rapidement possible au laboratoire ou bien conserver à 37 °C en attendant l'acheminement.

 

VII.5.7. Prélèvement de gorge

-  Conditions

De préférence pas d'antibiothérapie et à jeun.

-  Technique

Plusieurs écouvillons (au moins deux) sont nécessaires pour effectuer l’examen direct puis la mise en culture.

•       le patient doit ouvrir la bouche la langue tirée

•       éclairer avec la lampe d'examen

•       dégager la cavité buccale à l'aide d’une abaisse langue

•       à l'aide d'un écouvillon, bien racler les amygdales des 2 cotés, la muqueuse pharyngée ou toute zone présentant une inflammation en évitant de toucher la langue, la muqueuse jugale et les zones réflexogènes

•       si possible réaliser un frottis sur lame au moment du prélèvement (recherche d’association fuso-spirillaire dans l’angine de Vincent)

•       pour la recherche de bacille diphtérique, soulever la fausse membrane et écouvillonner sous celle- ci

•       noter l’aspect des amygdales.

VII.5.8. Prélèvement de selles 

-  Intérêt 

Les selles sont destinées soit à une coproculture, soit à un examen parasitologique, soit à la recherche de sang occulte.

La coproculture a pour objet de mettre en évidence l'agent responsable d'une infection du tractus digestif. Il est donc souhaitable de recueillir les selles avant toute antibiothérapie.

L’examen parasitologique des selles ou KAOP à pour but de rechercher les éléments parasitaires : kyste d’amibe, œuf d’helminthe et parasites adultes. Certains éléments comme les formes végétatives des flagellés et des amibes ne survivent pas longtemps à la température ambiante, il est donc important d’acheminer les échantillons de selles au laboratoire dans l’heure qui suit le recueil afin qu’on puisse les y retrouver.

La recherche de sang occulte dans les selles est recommandée pour le dépistage précoce des cancers intestinaux comme test de dépistage par diagnostic in vitro lors de l’analyse de selles en milieu professionnel.

-  Préconisation du prélèvement pour KAOP et coproculture

•       Identifier le flacon avec votre nom et prénoms si cela n’a pas été fait par le laboratoire. 

•       Noter la date et l’heure du recueil

•       Recueillir les selles dans le flacon stérile fourni par le laboratoire.

Le flacon doit être acheminé au laboratoire dans les plus brefs délais (1 heure environ).

NB : Pour les bébés ou jeunes enfants, les selles peuvent être recueillies dans la couche et transférées dans le pot à l’aide d’une spatule.

-  Préconisation du prélèvement pour recherche de sang occulte (RSO)

Ø  Recommandations alimentaires : dans la période comprise entre les 3 jours précédent le début du test et la fin du test, conseiller au patient :

•          D’absorber une nourriture riche en fibres telle que légumes, salades, fruits, pain complet et noix afin de favoriser le saignement d’éventuels cancers

•          D’éviter toute viande crue, ou semi crue et la charcuterie car la consommation d’aliments riche en sang peut entraîner un résultat positif sans que l’on ait affaire à un saignement gastro-intestinal

•          De ne pas prendre de vitamine C qui pourrait influencer le résultat du test.

Ø  Saignements : il est recommandé d’effectuer le test en dehors des périodes de menstruation

Ø  Diarrhée : en cas de diarrhée s’abstenir d’effectuer le test

 

 

VII.6. Analyses sous traitées

Certaines analyses (Anatomo-pathologie, bactériologie, une partie de la parasitologie et la biochimie) ne sont pas réalisées sur place. Elles sont sous traitées au laboratoire CERBA, Biomnis, et Prodiamed.

La préparation et l’envoi des échantillons sont effectués par le laboratoire BIOLAB7. Lorsqu’une analyse est sous traitée, le patient est informé lors de la revue de contrat.

Conditions à respecter pour les échantillons à sous traités prélevés dans une autre structure :

•       Prélèvements tissulaire (biopsies, pièce d’exérèse) : ils doivent être immédiatement fixés dans du formol à 10%. Dans le cas contraire, informer le laboratoire. La fiche de demande anatomo-pathologique doit être obligatoirement remplie

•       Frottis Cervico Vaginal : seule la technique monocouche est acceptée. Si nécessaire contacter le laboratoire pour le matériel de prélèvement. La date des dernières règles et le traitement contraceptif doivent être indiqués.

•       Liquides de ponction pour cytologie anatomo-pathologique : doivent être recueillis dans du formol à 10%, dans le cas contraire, recueillir sur tube sec et acheminer au plus tôt au laboratoire.

•       Prélèvement : contacter le laboratoire avant le prélèvement.

NB : Tout prélèvement transmis au laboratoire doit être identifié par le nom, prénom, date de naissance du patient, date et heure de prélèvement.

 

VII.7. Conduite à tenir en cas d’incident de prélèvement 

VII.7.1 Incidents survenus sur échantillon 

-  Incidents survenus sur échantillon

Les incidents pouvant survenir sur les échantillons peuvent être de diverse nature :

•       Prélèvement égaré

•       Pot ou tube cassé au cours du transport ou d’une manipulation

•       Echantillon contaminé lors du prélèvement

•       Prélèvement insuffisant

•       Non-conformité aboutissant à une mise au rebut

•       Analyse à refaire avec l’aliquote restante et entraînant le report du résultat etc.       Noter l’incident dans le suivi du dossier

-  Comment traiter l’incident ?

•       Si possible contacter le patient par téléphone;

•       Bien lui expliquer la nature et les causes de l’incident. S’excuser si nécessaire.

•       Selon le cas, convoquer à nouveau le patient pour refaire le prélèvement ou différer le retrait des résultats.

N.B. : En cas de besoin, un de nos agents se déplacera au chevet du patient pour corriger le dysfonctionnement.

Le patient n'a pas de contact téléphonique, il sera informé au moment du retrait du résultat.

VII.7.2. Incidents survenus sur le patient 

•       Saignement après prélèvement : ramener le patient dans la salle de prélèvement, continuer à comprimer la veine, bien s’assurer que l’hémostase est bien faite avant de remettre le pansement

•       Hématome après prélèvement : mettre un tampon alcool sur l’hématome.

•       Le patient a perdu connaissance : arrêter le prélèvement transformer le fauteuil de prélèvement en lit d’appoint, étendre le patient là-dessus et effectuer les gestes de 1ers secours

•       Si le patient ne revient pas à lui appeler l’urgentiste

 

VII.8. Conduite à tenir en cas d’accident avec exposition au sang 

En cas d’accident exposant au sang ou autres produits biologiques ; les consignes sont affichées au niveau du laboratoire :

1.  Nettoyer immédiatement la blessure avec de l’eau courante et du savon

2.  Désinfecter par trempage dans un dérivé chloré (dakin, eau de javel à 12° chlorométrique dilué au 1/10°) ou à du polyvidone iodé en solution ou encore l’alcool à 70°. Laisser en contact pendant au moins 5 minutes.

3.  En cas de projection sur les muqueuses (en particulier dans les yeux), rincer immédiatement au sérum physiologique ou à l’eau pendant au moins 10 minutes.

4.  L’évaluation des risques infectieux (VIH, VHC, VHB) doit être faite de façon urgente par un médecin référent pour la prophylaxie. Pour cela, le protocole d’urgence rédigé en association avec le médecin de prévention devra être affiché dans le service (indiquant les coordonnées du médecin référent et le suivi sérologique)

Le délai rapide de mise en route du traitement (si possible dans les 4 heures) reste un élément capital de l’efficacité. Un traitement prophylactique par les antirétroviraux est proposé en fonction du risque.

NB : Prévenir immédiatement un des biologistes pour contacter une des équipes des Services des Maladies Infectieuses (CHU Fann) pour le démarrage du traitement prophylactique

5.  Prévenir le médecin de prévention et déclarer l’accident

VII.9. Fiche de prélèvement VII.10. Transport des échantillons

Le transport des échantillons, réalisés par les agents du laboratoire, est effectué de manière à respecter les obligations légales et les exigences de délai et de température nécessaires pour les analyses :

-  Prélèvements réalisés sur site

Les échantillons sont déposés dans un portoir puis dans une boite et acheminés régulièrement au laboratoire.

 

-  Prélèvements réalisés à l’extérieur du laboratoire par les agents du laboratoire

Nos agents réalisent des prélèvements aux domiciles des patients, dans les cliniques et les hôpitaux.

Le système de triple emballage est utilisé avec les dispositions et normes d’étiquetage suivant :

•       Les récipients primaires sont les tubes, flacons, réceptacles d’écouvillon tous étanches. Ces récipients sont identifiés par les nom et prénom du patient + l’heure de prélèvement.

•       Le récipient secondaire est un sachet avec 2 compartiments : un compartiment destiné aux récipients primaires et le 2ème compartiment destiné à la prescription

•       Le récipient secondaire est placé dans une mallette avant d’être acheminé au laboratoire dans une voiture climatisée.

Certains échantillons doivent être transportés à des températures basses (gazométrie artérielle) afin de garantir la fiabilité des résultats. Le laboratoire dispose de sachets isothermes pour ce genre de prélèvement.

12.3 Prélèvement réalisés à l’extérieur par des agents des hôpitaux et cliniques

En cas de besoin, des ramassages peuvent être effectués dans les unités de soins, sur demande (téléphoner au secrétariat du laboratoire). Dans ce cas, les échantillons sont pris en charge au départ de la structure d’origine et à l’arrivée au laboratoire, de sorte à assurer un délai conforme aux besoins de la technique.

NB : Les échantillons prélevés et convoyés par les unités de soin vers le laboratoire, doivent l’être selon les clauses de la convention qui lie les 2 structures.

 

 

VII.11. ANALYSES COMPLEMENTAIRES 

A la réception de résultats, des analyses complémentaires peuvent être demandées par le médecin.

Le patient n’est pas systématiquement prélevé en cas d’analyses complémentaires, mais il doit être informé de la demande du médecin afin de donner son consentement.